可溶性Jagged 1/Fc嵌合蛋白对小鼠淋巴细胞活化、 增殖和周期的影响
作者:邢飞跃, 于哲, 刘静, 季煜华 作者单位:暨南大学组织移植与免疫研究中心, 暨南大学医学院, 广东 广州 510632
【摘要】 目的: 研究可溶性Jagged 1/Fc嵌合蛋白在小鼠淋巴细胞活化、 增殖和周期中的作用。方法: 选择有效剂量为500 μg/L Jagged 1/Fc嵌合蛋白(Jagged 1/Fc), 以活体染料/羧基荧光素乙酰乙酸琥珀酰亚胺酯染色, 建立在多克隆刺激剂刀豆蛋白A(ConA)或佛波醇酯(PDB)加离子霉素(Ion)刺激下评价淋巴细胞增殖的模型, 通过流式细胞术分析Jagged 1/Fc对淋巴细胞增殖的作用; 采用碘化丙锭染色检测Jagged 1/Fc对PDB加Ion刺激的淋巴细胞周期变化的影响; 利用荧光标记的mAb双染技术观察Jagged 1/Fc对T细胞早期和中期活化标志CD69和CD25表达的影响。结果: Jagged 1/Fc对ConA刺激或非刺激的CD3+细胞CD69和CD25的表达无明显影响, 对ConA或PDB加Ion刺激或非刺激的淋巴细胞的增殖指数也无明显影响, 导致非刺激的淋巴细胞subG0期细胞百分比增高, S期细胞百分比降低, 但并不影响PDB加Ion诱导的淋巴细胞各期的变化。结论: 这些结果提示500 μg/L Jagged 1/Fc对小鼠淋巴细胞活化和增殖无明显作用, 对PDB加Ion刺激的淋巴细胞周期也无明显影响, 但能促进未受刺激的淋巴细胞凋亡, 使细胞停滞于G0/G1期, 阻止其进入S期。
【关键词】 Jagged 1 淋巴细胞 活化 增殖 细胞周期
Effect of a soluble Jagged 1/Fc chimera protein on the activation, proliferation and cell cycle of lymphocytes in mice
XING Feiyue, YU Zhe, LIU Jing, JI Yuhua
Institute of Tissue Transplantation and Immunology, Department of Stomatology, Jinan University, Guangzhou 510632, China
[Abstract] AIM: To investigate effect of a soluble Jagged 1/Fc chimera protein (Jagged 1/Fc) on activation, proliferation and cell cycles of lymphocytes in BALB/c mice. METHODS: A model to evaluate the lymphocyte proliferation stimulated with a polyclonal activator, concanavalin A (ConA), was established by a carboxyfluorescein diacetatesuccinimidyl ester (CFDASE)labeling technique. Under an effective dose of 500 μg/L of Jagged 1/Fc, the effect of it on the lymphocyte proliferation was analyzed by flow cytometry. A propidium iodidelabeling technique was applied to estimate the influence of Jagged 1/Fc on the lymphocyte cellcycle stimulated by phorbol 12,13dibutyrate (PDB) plus Ionomycin (Ion). Expression levels of CD69 and CD25 molecules on surface of CD3+ lymphocytes activated with ConA in the presence of Jagged 1/Fc were observed by a fluoresceinconjugated monoclonal antibodylabeling technique. RESULTS: Jagged 1/Fc had no effect on the expression levels of CD69 and CD25 of the CD3+ lymphocytes stimulated with or without ConA, and no effect on the proliferation index of the lymphocytes stimulated by ConA or PDB plus Ion. It led to the increase of subG0 phase cell proportion and the decrease of S phase cell proportion of the lymphocytes, but did not influence the changes of the lymphocyte cellcycle induced by PDB plus Ion. CONCLUSION: The results suggest that Jagged 1/Fc has no obvious effect on the activation and proliferation of lymphocytes in mice, but may promote the apoptosis of them, cause the G0/G1 phase arrest and block the S phase entry.
[Keywords]Jagged 1; lymphocyte; activation; proliferation; cell cycle
Jagged 1是存在于哺乳动物细胞膜上Notch受体的主要配体之一, 为单次跨膜糖蛋白, 表达于骨髓、 胎儿肝基质和胸腺上皮等多种细胞, 参与调控许多组织的生长发育, 维持正常造血干细胞的更新和分化。Jagged 1在T细胞、 抗原提呈细胞(antigen presenting cells, APC)表面表达丰富, 介导树突状细胞(dendritic cells, DC)的成熟和分化[1]。近来发现, Jagged 1与相应的Notch受体结合, 激活Jagged 1Notch信号通路, 能够诱导外周T淋巴细胞向2型辅助T细胞(helper T cell 2, Th2)[2]和调节性T细胞(regulatory T cells, Treg)[3-5]分化, 可能在诱导免疫耐受中发挥重要作用。我们直接利用IgG Fc段融合的Jagged 1胞外结构域, 即可溶性Jagged 1/Fc嵌合蛋白, 探讨其对小鼠淋巴细胞活化、 增殖和周期的作用, 将有助于进一步认识Jagged 1Notch信号通路对外周淋巴细胞生物学行为的影响。
1 材料和方法
1.1 材料 雄性SPF级BALB/c小鼠, 8周龄, 质量(20.3±2.0) g, 购自广东省医学实验动物中心。刀豆蛋白A(ConA)、 二丁基佛波醇酯(phorbol 12,13dibutyrate, PDB)、离子霉素(ionomycin, Ion)和碘化丙锭(propidium iodide)购自Sigma公司; 羧基荧光素乙酰乙酸琥珀酰亚胺酯(carboxyfluorescein diacetatesuccinimidyl ester, CFDASE)购自Molecular Probes公司; 可溶性Jagged 1/Fc嵌合蛋白(Jagged 1/Fc chimera protein, Jagged 1/Fc)为R&D Systems产品; antiCD3PE、 antiCD69FITC和antiCD25FITC购自eBioscience公司; RPMI1640和胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)为GibcoBRL产品。
1.2 方法
1.2.1 淋巴结细胞悬液的制备 脱颈断髓处死BALB/c小鼠, 无菌分离双侧腋窝、 锁骨下、 腹股沟浅表淋巴结和肠系膜淋巴结, 去除被膜, 轻柔机械研磨, 于200目不锈钢网筛过滤, 收集细胞, 用冷PBS离心(300 g, 5 min)洗涤2次, RPMI1640完全培养基(含100 mL/L FBS, 下同)重悬细胞, 调整细胞密度至2×109/L。
1.2.2 荧光抗体染色分析CD69和CD25的表达 取2×109/L淋巴结细胞接种于24孔培养板, 每孔1 mL。设PBS对照组、 Jagged 1/Fc组、 ConA组和Jagged 1/Fc+ConA组, Jagged 1/Fc和ConA的终浓度分别为500 μg/L和5 mg/L。置37℃、 50 mL/L CO2孵箱中培养6 h, 离心(300 g, 5 min)收集细胞, 加入antiCD3PE和antiCD69FITC各0.5 μg, 混匀后4℃下避光放置30 min。PBS离心(300 g, 5 min)洗涤细胞2次, 在FACSCalibur流式细胞仪(Becton Dickinson)上检测和分析。另取淋巴结细胞悬液, 分组如上, 同样条件下培养24 h, 离心收集细胞, 加入0.5 μg antiCD3PE和0.25 μg antiCD25FITC, 余后处理同前。
1.2.3 CFDASE染色检测淋巴细胞增殖 DMSO溶解CFDASE, 配成10 mmol/L储存液, 置-20℃保存, 临用前取其适量用PBS稀释成2 μmol/L的工作液, 平衡至室温。用PBS调淋巴结细胞的密度至2×1010/L, 加入等体积CFDASE工作液, 终浓度为1 μmol/L, 充分混匀, 在室温下避光轻轻振荡10 min, 然后用PBS离心(300 g, 5 min)洗涤细胞2次, 重悬于完全培养基中, 并调整细胞密度为2×109/L。将细胞种于96孔培养板中, 每孔200 μL, 设Jagged 1/Fc组、 Jagged 1/Fc+ConA组、 ConA组、 Jagged 1/Fc+PDB+Ion组、 PDB+Ion组及PBS对照组。分别加入终浓度为500 μg/L Jagged 1/Fc、 5 mg/L ConA、 1×10-7 mol/L PDB和0.5 mg/L Ion, 置37℃、 50 mL/L CO2孵箱中培养48 h或72 h, 收获细胞, 用FCM检测和分析, 通过ModFitLT V3.0(pMac)软件按以下公式自动拟合显示各组细胞的增殖指数(proliferation index, PI): PI=增殖后细胞总数/增殖前细胞总数。
1.2.4 碘化丙锭染色检测淋巴细胞周期 取淋巴结细胞悬液接种于96孔培养板上, 设Jagged 1/Fc组、 Jagged 1/Fc+PDB+Ion组、 PDB+Ion组及PBS对照组。分别加入Jagged 1/Fc和PDB+Ion(浓度同前), 置37℃、 50 mL/L CO2培养箱中孵育48 h, 收集细胞, PBS离心(300 g, 5 min)洗涤细胞1次, 700 mL/L乙醇固定30 min, PBS离心(300 g, 5 min)洗涤细胞2次, 碘化丙锭溶液染色15 min, 然后用FCM检测各组细胞DNA含量。
1.2.5 FCM检测 在前散射(FSC)对侧散射(SSC)二维散点图中划出淋巴细胞区R1, 然后对淋巴细胞CFDASE、 碘化丙锭、 FITC和PE荧光强度进行检测。其中, CFDASE和FITC为荧光1(FL1), 碘化丙锭和PE为荧光2(FL2)。每管样品检测10000个细胞, 所获数据用CellQuest软件分析。
1.2.6 统计学处理 实验数据以x±s表示, 多组间比较采用OnewayANOVA分析, 两组间比较用t检验, P<0.05为有统计学意义。
2 结果
2.1 Jagged 1/Fc对淋巴细胞活化的影响 在静息状态下, 小鼠淋巴细胞低表达CD69和CD25, 分别为10.24%和2.5%。ConA刺激6 h和24 h后, 淋巴细胞表面CD69和CD25表达明显增高, 分别达30.19%和35.55%。在500 μg/L Jagged 1/Fc存在下, 处于静息状态或ConA刺激的淋巴细胞的CD69和CD25并无统计学意义(P>0.05)。这些提示Jagged 1/Fc对小鼠淋巴细胞早期和中期活化无明显影响(图1A、 B)。
图1 可溶性Jagged 1/Fc对CD3+淋巴细胞CD69和CD25表达的影响(略)
Fig 1 Influence of soluble Jagged 1/Fc on CD69 and CD25 molecule expressions of mouse CD3+ lymphocytes
A: Effect of soluble Jagged 1/Fc on CD69 molecule expression of CD3+ lymphocytes stimulated with or without ConA; B: Effect of soluble Jagged 1/Fc on CD25 molecule expression of CD3+ lymphocytes stimulated with or without ConA.
2.2 Jagged 1/Fc对淋巴细胞增殖的影响 小鼠淋巴细胞培养48 h, 对照组仅见1个亲代峰, 无增殖峰; PDB+Ion组亲代细胞CFDASE荧光强度逐渐减弱, 呈现2个明显的子代峰, 子代细胞每分裂一代荧光强度减半(图2A)。淋巴细胞培养72 h, 对照组细胞稍有增殖, 出现1个亲代峰和2个很小的子代峰; ConA组细胞明显增殖, 出现4个子代峰; 在500 μg/L Jagged 1/Fc存在下, ConA刺激或非刺激的淋巴细胞增殖峰并无明显变化(图2B)。 ModFit 软件拟合显示, Jagged 1/Fc存在时, 淋巴细胞PI值也无统计学意义。以上提示500 μg/L Jagged 1/Fc对小鼠淋巴细胞增殖无明显作用。
图2 可溶性Jagged 1/Fc对小鼠淋巴细胞增殖的影响(略)
Fig 2 Influence of soluble Jagged 1/Fc on the proliferation of mouse lymphocytes
A: Effect of soluble Jagged 1/Fc on the lymphocyte proliferation stimulated with or without PDB plus Ion for 48 h; B: Effect of soluble Jagged 1/Fc on the lymphocyte proliferation stimulated with or without ConA for 72 h.
2.3 Jagged 1/Fc对PDB+Ion诱导下淋巴细胞周期的影响 PDB+Ion刺激48 h后, 淋巴细胞subG0期和G0/G1期荧光强度明显减弱, S期和G2/M期荧光强度增强; 加入Jagged 1/Fc后, PDB+Ion诱导的淋巴细胞各期荧光强度无明显变化, 而非诱导的淋巴细胞subG0期荧光强度增高, S期荧光强度减弱(图3A)。加入Jagged 1/Fc后, PDB+Ion诱导的淋巴细胞各期细胞所占百分比无明显改变, 而非诱导的淋巴细胞subG0期细胞所占百分比增高, S期细胞所占百分比降低(图3B)。这些提示, Jagged 1/Fc对PDB+Ion刺激的淋巴细胞周期无明显影响, 但能促进未受刺激的淋巴细胞凋亡, 使细胞停滞于G0/G1期, 抑制其进入S期。
图3 可溶性Jagged 1/Fc对小鼠淋巴细胞细胞周期的影响(略)
Fig 3 Influence of soluble Jagged 1/Fc on the mouse lymphocyte cell cycle
A: Effect of soluble Jagged 1/Fc on the lymphocyte cell cycle induced with or without PDB plus Ion for 48 h; B: Changes of the lymphocyte cell proportion induced with or without PDB plus Ion in the presence of soluble Jagged 1/Fc. aP<0.05, bP<0.01 vs control group.
3 讨论
在哺乳动物, Notch配体包括Delta 1、 Delta 3、 Delta4和Jagged1、 Jagged2两类。单独敲除Jagged1、 Jagged 2或Delta 1、 Delta 3和Delta 4的小鼠呈现不同的表型, 提示这两类配体具有非重叠作用。Delta和Jagged在骨髓和胸腺中均有表达, 它们对造血干细胞和胸腺细胞的更新和分化的影响仍存有争议: 有文献表明Jagged 1介导的Notch信号通路对于造血干细胞的自我更新和分化无关[6], 也有报道Delta 1能完全抑制人造血祖细胞向B细胞系分化, 促进T细胞和NK前体细胞表型的形成, 而Jagged 1并不影响T细胞、 B细胞和NK细胞的发育[7]。居多的研究结果支持Delta 1、 Delta 4和Jagged 2能抑制造血干细胞或造血祖细胞向B细胞系分化, 其中, Delta 1和Delta 4诱导其向T细胞分化, Jagged 2诱导其向NK细胞分化, Jagged 1则对其分化无明显影响。Delta 1和Jagged 1均能抑制胸腺细胞向B细胞分化, Delta 1诱导其向T细胞分化, Jagged 1则诱导其向NK细胞分化[8-10]。可见, 不同Notch配体在中枢免疫系统的淋巴细胞分化中起着不同作用。
在外周免疫系统, T细胞和APC表面丰富表达Jagged 1和Delta 1, 它们激活的Notch信号是否介导外周淋巴细胞分化呢? 很诱人的发现是: Delta 1可以诱导外周T细胞向Th1和CD8+调节性T细胞(CD8+ regulatory T cells, CD8+ Tr)分化, 而Jagged 1可能与Th2、 1型调节性T细胞(regulatory T cell 1, Tr1)和Th3分化有关[2-4]。另有研究证明Delta主要涉及T细胞、 B细胞去向和外周T细胞的成熟, Jagged 1则与γδ淋巴细胞和NK细胞的发育以及外周T细胞的分化有关[11]。不同Notch配体介导不同的Notch信号, 决定着外周淋巴细胞生成和分化的不同命运。Jagged 1与Delta 1对Th和Tr分化的不同影响, 可能为诱导Th 和Tr不同亚群细胞定向分化提供新的药物靶点。纵览文献注意到这些研究多采用含有Jagged 1基因全长或胞外段的表达载体转染细胞或与固有高表达Jagged 1的细胞共培养的手段, 而利用可溶性Notch配体研究Notch信号通路活化对外周淋巴细胞生物学行为的影响的报道甚少。Rutz等发现Delta 1/IgG和Jagged 1/IgG重组融合蛋白能抑制抗CD3刺激CD4+T细胞的早期和中期活化标志CD69和CD25的表达, 抑制CD4+T细胞的增殖, 呈剂量依赖关系; 同时, 转录因子NFAT、 AP1和 NFκB的活化也被抑制。Delta 4/IgG触发的Notch信号促进T细胞活化和增殖。可是Jagged 1/IgG并不影响PMA(phorbol 12myristate 13acetate)和离子霉素诱导的CD4+T细胞表面CD69的表达。Notch配体对初始T细胞分化的调节依赖于Notch信号介导TCR信号的强弱变化, 而不是仅仅依靠γ分泌酶介导的Notch胞内段释放的经典Notch信号转导[12]。本研究根据文献[13]和我们观察不同剂量Jagged 1/Fc嵌合蛋白诱导小鼠淋巴结细胞分化的结果(另文发表), 选择有效剂量为500 μg/L Jagged 1/Fc嵌合蛋白, 发现它不影响ConA刺激或非刺激的淋巴结CD3+细胞的早期和中期活化, 对ConA或PDB加Ion刺激或非刺激的淋巴细胞的增殖也无明显影响, 但能促进未受刺激的淋巴细胞凋亡, 使细胞停滞于G0/G1期, 阻止其进入S期。关于Jagged 1对外周淋巴细胞增殖和活化的报道不一, 可供参考的文献极其有限。Eagar等报道Jagged 1抑制T细胞活化、 增殖和细胞因子的生成, 而其他两个研究组发现阻断Notch信号通路可抑制T细胞增殖和CD25的表达, 结构性活化的Notch 1的表达能增加T细胞活化[12]。究其原因, 我们认为可能与不同Notch配体激发的Notch信号不同有关, 与不同来源淋巴细胞的前体细胞有关, 与Jagged 1的固定和非固定形式有关, 也与刺激剂不同有关, 后者也说明Jagged 1Notch信号可能与其他信号通路关联, 从而发挥调节T细胞的作用。此外, 直接利用可溶性Jagged 1蛋白探讨其作用和机制有利于剂量的严格控制和其生理、 药理及毒理效应的准确评价, 就其临床开发应用而言更具有可操作性。
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