Omi/HtrA2基因与神经变性疾病的研究进展
| Omi/HtrA2基因与神经变性疾病的研究进展 |
|
|
|
作者:赵西耀 陈煜森 作者单位:广东医学院附属医院神经内科,广东 湛江 524001 【摘要】 人HtrA2(也称作Omi)是HtrA丝氨酸蛋白酶家族的新成员,可以通过破坏X染色体连锁的凋亡蛋白抑制物和caspase的相互作用,和(或)直接利用其蛋白酶活性诱导凋亡,也可以校正、降解错误折叠的蛋白质,抵抗应激,具有细胞保护的作用。研究已经发现它参与了许多疾病的发生、发展。作者就其生物学功能、单核苷酸多态性与神经变性疾病的相关性做一综述。 【关键词】 Omi/HtrA2 线粒体丝氨酸蛋白酶 基因多态性 神经变性疾病 人HtrA2(也称作Omi)是HtrA丝氨酸蛋白酶家族的一个新成员,与大肠杆菌HrtA基因有广泛的同源。Omi/HtrA2是新近发现的一种致凋亡分子,许多其他大分子可以通过它诱导细胞凋亡;它也具有细胞保护作用,参与了许多疾病的发生、发展。作者就其生物学功能、单核苷酸多态性与神经变性疾病的相关性做一综述。 1 Omi/HtrA2的生物学特点 1.1 Omi/HtrA2的分子大小和结构 Omi/HtrA2基因位于人类染色体2p13.1,转录生成2.1 kb和4.5 kb 2种不同的mRNA,但以前者为主。它含8个外显子,全长Omi/ HtrA2蛋白含有458个氨基酸,大部分的正常组织器官中都有表达。在人类细胞系中,可以观察到相对分子量38 000和相对分子量40 000 2种多肽。 正常情况下,成熟Omi/HtrA2与另外一种蛋白质Smac/DIABLO共存于线粒体内、外膜之间的膜间隙中,是一种线粒体蛋白质[1]。有3个主要结构:氨基末端的Reaper样基序[AlaValProSer(AVPS)],可以与X染色体连锁凋亡抑制蛋白(Xlinked Inhibitor of Apoptosis Protein,XIAP)结合,发挥其促凋亡作用;中心的丝氨酸蛋白酶功能区(第166~342位氨基酸);C末端的PDZ结构域(第364~445位氨基酸),这一区域拥有独特的结合特异性,对Omi/HtrA2作用底物的选择起到重要作用[2]。除以上3个主要功能区以外,Omi/HtrA2前60位氨基酸序列(N末端)中含有线粒体定向序列,具有引导Omi/HtrA2进入线粒体的作用。在105~123位氨基酸残基之间可能还存在1个跨膜区。 1.2 Omi/HtrA2的生物学作用 1.2.1 Omi/HtrA2的致凋亡作用 完整的Omi/HtrA2分子在内质网合成后,由线粒体定向序列引导转运进入线粒体,通过此处的加工,形成成熟Omi分子,并储存在线粒体膜间隙中。当细胞受到刺激发生应激反应时,线粒体膜通透性增加,Omi/HtrA2分子从线粒体释放并进入细胞质和(或)细胞核中。在胞质中,它通过N端4残基IAP结合要区,即AVPS结合凋亡蛋白抑制物(inhibitor of apoptosis protein,IAP)的杆状病毒IAP重复结构域(baculovirus IAP repeats,BIRs),通过破坏caspaseIAP复合物,和/或诱导IAPs的自动泛素化和降解,促进了caspase3、7、9活性,因而解除了IAPs对caspases的阻止,诱发了凋亡。同时还可借自身的酶活性切割、降解IAPs[3]。另外,IAPs也可以下调Omi/HtrA2的水平。Omi/HtrA2与凋亡拮抗分子ped/pea15的相互作用也与此类似[4]。 此外,Hedge等[1]利用MCF7细胞,发现caspase被XIAP阻止后,Omi/HtrA2仍可以诱导细胞死亡,细胞质中缺乏AVPS基序的Omi/HtrA2变异体也引起了细胞死亡。这都证明Omi/HtrA2具有caspase非依赖的致凋亡作用。此作用机制,目前研究较少。 已经发现许多物质可以增强Omi/HtrA2的水解酶活性,促进细胞死亡:p53蛋白[5]、S100 A8 /A9、超氧化物歧化酶1、WARTS蛋白激酶,即大肿瘤抑制物1有丝分裂激酶[WARTS (WTS)/large tumorsuppressor 1 mitotic kinase,WTS]、Fas、早老素1(presenilin1,PS1)蛋白、PINK1等[6]。同时,一些分子可以通过阻止Omi/HtrA2的水解酶活性,阻止凋亡。线粒体中Bcl2过多表达、Akt激酶、癌基因ras、人类乳头状病毒E6、人类乳头状病毒8编码的癌蛋白、病毒干扰素调节因子1(viral IFN regulatory factor 1,vIRF1)[7]等都具有阻止Omi/HtrA2的水解作用,而发挥抑制凋亡的作用。 过度表达Omi/HtrA2将导致线粒体膜功能障碍,将促进caspase介导的和caspase独立的细胞死亡。也有报道称,Omi/HtrA2的神经元特异性过多表达的鼠,既不影响正常的神经发展,也不影响其他的表型,如行为。这些鼠具有正常的体质量、毛发、活动性、行为、器官质量和繁育能力[8]。 1.2.2 Omi/HtrA2的细胞保护作用 Omi/HtrA2是一类较为特殊的蛋白质,它既具有蛋白酶活性,同时还是分子伴侣。随着外界环境温度的升高,它将通过PDZ结构域重新定位,由分子伴侣转变成为蛋白酶功能。当温度较低时,Omi/HtrA2更容易使错误折叠的蛋白重新正确折叠。而在温度较高的情况下,错误折叠蛋白损伤过于严重,Omi/HtrA2只有利用蛋白酶活性将其裂解,才能有效地将其移除以维持细胞正常功能。正常情况下,Omi/HtrA2感受应激刺激,阻止错误折叠和破坏的蛋白质的积累,保持线粒体膜完整和具有功能。 通过神经元特异性Omi/HtrA2过表达的转基因鼠的研究发现:Omi/HtrA2在神经元内的主要角色可能是对抗应激的神经保护作用。Omi/HtrA2纯合子基因敲除的鼠,将会因为纹状体神经元丧失,导致早期的死亡。对此鼠的提取物进行分析显示,此种动物线粒体柠檬酸合酶的合成也会下降,从而提示线粒体密度的下降[8]。用透射电镜的方法研究发现,当遭受细胞应激刺激物如复合物I阻止子毒鱼藤素和线粒体膜电位解耦连剂碳酰氰基对氯苯腙时,Omi/HtrA2丧失细胞线粒体形状的明显改变,而在对照组中没发现这种改变。从而证实此种细胞对应激敏感性增加[9]。这些都证明了Omi/HtrA2的细胞保护作用。 1.2.3 Omi/HtrA2与细胞周期的相关性 Kuninaka等[10]发现WTS与Omi/HtrA2的PDZ区域相互作用,WTS既是其底物,也能促进其蛋白酶活性。当用十字孢碱处理caspase9缺陷鼠胚胎成纤维细胞(mouse embryonic fibroblasts,MEFs)时,激活的Omi将水解WTS,但未引起细胞死亡。从HeLa细胞内删除Omi蛋白,有丝分裂的持续时间没有明显改变,但细胞繁殖将会加速,删除WTS对细胞分裂的S期具有同样效果。因此推测Omi水解WTS产生的片段可能在G1/S期阻止细胞分裂,从而证明其参与控制细胞增殖。 2 Omi/HtrA2的多态性 目前对其多态性研究集中于其外显子区。成熟的Omi/HtrA2位置4的丙氨酸变为异亮氨酸时,XIAP对BIR的亲和力将增加。成熟Omi/HtrA2的氨基端在与XIAP相互作用时起重要作用的丙氨酸和具有蛋白酶活性的丝氨酸残基,二者任意1个发生突变都能减弱Omi/HtrA2促进凋亡的能力。而在二者都突变时,其促凋亡作用将丧失。PDZ功能区对二者均有调节作用。Yang等[11]研究发现Omi/HtrA2的212位丝氨酸突变为丙氨酸时,Akt无法对其磷酸化,Omi/HtrA2将保留丝氨酸蛋白酶活性,诱导更多的凋亡。当发生HtrA2/OmiS212D突变时,突变的拟态磷酸化,将因失去其蛋白酶活性而不能诱导凋亡。 Strauss等[12]通过DNA变性,对PCR片段进行高效液相色谱层析、直接测序、细胞荧光分析等方法,在Omi/HtrA2的氮端和PDZ区分别发现了G421T(A141S)和G1195A(G399S)突变。二者分别位于外显子1和7。此2种突变的Omi/HtrA2与野生型的具有相似的亚细胞分布,不影响加工成为成熟的Omi/HtrA2。虽然其编码蛋白质不相同,但这2种突变都可以导致Omi/HtrA2蛋白酶活性的缺失。通过对表达过多的此2种突变的Omi/HtrA2的细胞进行分析,与野生型细胞相比,发现后二者更易引起线粒体膜电位的降低,及形态学的改变和肿胀,线粒体功能障碍,因此调节了细胞死亡。并发现表达S399突变的Omi/HtrA2的细胞对于应激诱导的死亡更为敏感。基于6个毗邻的单核苷酸多态性的分析,在拥有Omi/HtrA2基因染色体的功能区中,11个标记的基因型显示,G399S突变的携带者都具有同样的单倍型。他们在外显子1中还发现了不导致氨基酸改变的C447T突变。 Bogaerts等[13]通过突变分析的方法验证了Omi/HtrA2的PDZ区域的1个新的突变位点Arg404Trp,该位点的突变将预测Omi/HtrA2失活。通过荧光素酶报告基因分析的数据,在可能影响Omi/HtrA2表达的5′和3′区域,验证了六个患者特异性突变体,并推测此突变可能影响了其转录活性。 目前发现的多态性位点还有S276C,此位点的突变可以导致帕金森病表型。S306A的突变,导致Omi/HtrA2活性的丧失。 3 Omi/HtrA2与神经变性疾病的相关性 3.1 Omi/HtrA2与阿尔茨海默病 Omi/HtrA2参与阿尔茨海默病可以通过以下4种形式:(1)通过酵母双杂交和亚细胞分级等方法,发现Omi/HtrA2可以结合淀粉样前蛋白(amyloid precursor protein,APP)的氮末端半胱氨酸富集区,直接促进细胞内与该酶接合的APP的降解。Park等[14]发现切割位点是APP的306到588位氨基酸区域内,其产物是APP695,包含535~695位氨基酸的C161片段;(2)通过酵母双杂交和免疫共沉淀的方法发现,Omi/HtrA2可以通过其PDZ区域接合到分泌酶复合物的关键成分,β淀粉状蛋白(amyloid beta,Aβ)、PS1和PS2的羧基端,影响该酶的水解作用,从而阻止了APP和Aβ的产生[14];(3)PS1的羧基末端可以结合到Omi/HtrA2的PDZ功能区,显著增加Omi/HtrA2的蛋白酶活性,促进凋亡的发生[15];(4)Park等[16]运用酵母双杂交和免疫共沉淀的方法发现Omi/HtrA2还可以直接水解Aβ。 3.2 Omi/HtrA2与帕金森病 Karsten等[12]对414例帕金森患者和331例健康人用G421T多态性做1个相关性研究,发现病例组中有26个杂合子个体(6.2%),对照组中只有10个(3%),并验证了A141S基因多态性与PD呈显著性相关(P<0.05),同时没有发现突变的纯合子携带者。相比之下,在4个散发性的PD患者中得到确认的G1195A的替代,在健康对照的740条同源染色体中却没有发现。他们还在原发性PD患者大脑Lewy小体(PD的特征性病理改变)中检测到了Omi/HtrA2分子,同时观察到编码Omi/HtrA2的基因发生突变时,引起了与PD特征相同的神经变性。 Martins等[17]发现Omi/HtrA2敲除动物的分析表明,从出生后18 d起,与野生型和杂合型相比,它们显示了明显的表型改变。最明显的改变有:出生18 d,断奶后体质量不增,体材瘦小。还有总体上器官体积减小,以胸腺,心脏和脾特别明显,偶尔有毛发的缺损。该鼠还存在线粒体功能障碍,纹状体中神经元数量的选择性丧失,帕金森表型的神经衰退疾病,并由此导致在出生30 d左右死亡。黑质纹状体通路的突触前和突触后缺陷,纹状体前面区域,有神经元的丧失和Th阳性纤维的降低,这和一些帕金森综合症具有相似性。 运动神经元退变2(motor neuron degeneration 2,mnd2)鼠具有帕金森样表型,比如肌强直和震颤,纹状体神经元丧失导致的早期死亡。这可以由一种位于Omi/HtrA2蛋白酶活性区域Ser276Cys的错义突变引起的。它使Omi/HtrA2的蛋白酶活性极大地降低,却不影响Omi/HtrA2的定位及与IAPs的结合能力。Jones等[18]的研究显示此突变可引起线粒体功能障碍。靶向性的Prss2基因纯合子缺失导致的Omi/HtrA2无表达鼠研究证明,这些动物的外表是和mnd2鼠是同类的。Omi/HtrA2突变的帕金森患者也具有类似现象。 3.3 Omi/HtrA2与亨延顿舞蹈病 亨廷顿舞蹈病的发病机制涉及了突变亨廷顿基因导致的毒性,和野生型等位基因潜在降低的保护作用。分子结构方面的异常包括该病细胞中聚集体的出现,转录失调,改变的线粒体膜电位,异常的Ca2+调控,和暴露于毒性刺激物时,该病细胞和组织增加的细胞色素C的释放,caspase9和caspase3的激活。Goffredo等[20]发现导致亨延顿舞蹈病的一个重要原因就是脑细胞中Omi/HtrA2释放紊乱引起胞浆中IAP1和XIAP含量降低。利用HTRA2的特异性抑制剂ucf101能够抵抗亨延顿细胞中IAPs的降解,增加细胞的存活,延缓疾病的进程,并指出IAPs可以成为该病潜在的药物靶点。 4 展望 Omi/HtrA2是哺乳动物体内一种重要的线粒体丝氨酸蛋白酶,在蛋白质修复和细胞凋亡中有重要作用,迄今为止相关分子机制尚不完全清楚,特别是在生理、病理过程中的调控机制还未深入涉及,但是随着研究步伐的加快,对Omi/HtrA2的认识也将更为全面。另外,随着特异性阻断剂的出现和应用,下一步应该加大对Omi/HtrA2与相关疾病关系的研究力度,这将为临床针对特定靶点治疗有关疾病提供一定依据。 【参考文献】 [2]Li W,Srinivasula SM,Chai J,et al.Structural insights into the proapoptotic function of mitochondrial serine protease HtrA2/Omi[J].Nat Struct Biol,2002,9(6):436 441. [3]Alnemri ES.HtrA2 and Parkinson′s disease:think PINK?[J].Nat Cell Biol,2007,9(11):1227 1229. [4]Trencia A,Fiory F,Maitan MA,et al.Omi/HtrA2 Promotes Cell Death by Binding and Degrading the Antiapoptotic Protein ped/pea15[J].J Biol Chem,2004,279(45):46566 46572. [5]Jin S,Kalkum M,Overholtzer M,et al.CIAP1 and the serine protease HTRA2 are involved in a novel p53dependent apoptosis pathway in mammals[J].Genes Dev,2003,17(3):359367. [6]PlunFavreau H,Klupsch K,Moisoi N,et al.The mitochondrial protease HtrA2 is regulated by Parkinson′s diseaseassociated kinase PINK1[J].Nat Cell Biol,2007,9(11):12431252. [7]Ma X,Kalakonda S,Srinivasula SM,et al.GRIM19 associates with the serine protease HtrA2 for promoting cell death[J].Oncogene,2007,26(33):4842 4849. [8]Liu MJ,Liu ML,Shen YF,et al.Transgenic mice with neuronspecific overexpression of HtrA2/Omi suggest a neuroprotective role for HtrA2/Omi[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,362(2):295300. [9]Martins L M,Morrison A,Klupsch K,et al.Neuroprotective Role of the ReaperRelated Serine Protease HtrA2/Omi Revealed by Targeted Deletion in Mice[J].Mol Cell Biol,2004,24(22):98489862. [10]Kuninaka S,Iida SI,Hara T,et al.Serine protease Omi/HtrA2 targets WARTS kinase to control cell proliferation[J].Oncogene,2007,26(17):23952406. [11]Yang L,Sun M,Sun XM,et al.Akt attenuation of the serine protease activity of HtrA2/Omi through phosphorylation of serine 212[J].J Biol Chem,2007,282(15):1098110987. [12]Strauss KM,Martins LM,PlunFavreau H,et al.Loss of function mutations in the gene encoding Omi/HtrA2 in Parkinson′s disease[J].Hum Mol Genet,2005,14(15):20992111. [13]Bogaerts V,Nuytemans K,Reumers J,et al.Genetic variability in the mitochondrial serine protease HTRA2 contributes to risk for Parkinson disease[J].Hum Mutat,2008,29(6):832840. [14]Park HJ,Kim SS,Seong YM,et al.BetaAmyloid Precursor Protein is a direct cleavage target of HtrA2 serine protease:implications for the physiological function of HtrA2 in the mitochondria[J].J Biol Chem,2006,281(45):3427734287. [15]Gupta S,Singh R,Datta P,et al.The Cterminal tail of presenilin regulates Omi/HtrA2 protease activity[J].J Biol Chem,2004,279(44):45844 45854. |

