基因修饰小鼠应用于心脏研究的进展
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作者:杜晓军 作者单位:实验心脏学研究室,Baker心脏研究所,墨尔本,澳大利亚 【摘要】 基因修饰(敲除、变异和过度表达)小鼠自90年代初应用于心脏学研究。近十余年来,利用这一类模型的研究发现对心血管领域所取得的重要进展有着突出的贡献,已经成为该领域里具有举足轻重地位的研究手段。目前,基因修饰小鼠模型的数量日益增多并已形成系统,有关的心脏表现型数据库日趋丰富,多种从整体到分子水平的表现型的研究手段已十分成熟。在今后的心脏研究中,小鼠模型有望对阐明疾病的分子机制和探索新的治疗途径起到很大的推动作用。 【关键词】 基因修饰小鼠 脏学 基因敲除 基因过度表达 From mouse to man, from gene to clinic: Progress in heart research using genetically modified mouse models Du Xiaojun (Experimental Cardiology Laboratory, Baker Heart Research Institute, Melbourne, Australia) ABSTRACT: Since the 1990s, models of genetically modified mice (gene knockout, mutation or transgene overexpression) have been increasingly used in heart research. The findings from this class of murine models have contributed significantly to a number of research breakthroughs achieved in the last 15 years. Currently, the number of genetically modified mouse strains has been increasing steadily. These models that targeted a family or a functionally relevant group of proteins have formed systemic tools for research use. The database of mouse cardiac phenotype has been established. Meanwhile, the research methodology and strategic approach exploring mouse cardiac phentypes at molecular to in vivo levels have been mature. It is expected that the use of this class of genetically targeted mouse models will become increasingly important in future research. KEY WORDS: genetically modified mouse; cardiology; gene knockout; gene overexpression 在破译了人类DNA编码序列之后,科研人员面临的更艰巨的任务是探讨基因在生命健康及疾病发生发展过程中的作用,从而寻求疾病诊治的新途径。目前开展这方面研究的重要手段之一是已广泛应用的基因修饰小鼠。近十余年的研究证实,这一类模型的应用对生物医学领域新近取得的重要进展有着突出的贡献。因此,Rario Capecchi,Martin Evans和Oliver Smithies荣获了2007年度诺贝尔生理和医学奖,以表彰他们在奠定应用小鼠胚胎干细胞进行特定基因干预原理方面的贡献。 1 基因修饰小鼠的种类 表1 基因修饰小鼠的种类(略) Table 1 Types of genetically modified mouse models 图1 不同小鼠品系间杂交(crossbreeding)可供研究基因(蛋白质)之间的相互作用以及心脏病的基因治疗。例如在探讨基因治疗心力衰竭方面,品系间杂交方法可以研究一种提高心肌收缩性的基因干预能否纠正某一种基因干预所引起的心肌病和心力衰竭(略) Fig.1 Crossbreeding of strains of mice wtih specific gene targeting allows for investigating genegene (or proteinprotein) interactions or explorating gene therapy of heart disease, such as heart failure. A: Depicted are two strains of genetically modified mice with cardiac phenotypes of either cardiomyopathy and heart failure (indicated by yellow colour) or a markedly enhanced myocardial contractility (indicated by red colour). B: Crossbreeding is useful in determining whether the heart failure phenotype seen in the cardiomyopathy strain can be reversed by the specific genetargeting leading to an enhanced inotropy (indicated by blue colour) 2 小鼠心脏表现型的研究手段 3 应用基因修饰小鼠模型所取得的重要研究进展 图2 A:应用心脏超声影像学(左)或压力/容积心导管(右)确定小鼠心脏形态和功能。图示小鼠左心室(LV)短轴和长轴二维影像;B:显微外科手术方法造成冠状动脉结扎(左)或主动脉缩窄(右)(略) Fig.2 A: Determination of cardiac toporgraphy and function of mice by echocardiography (Left) or by pressure/volume catheter (right). Images are short and longaxis views of the left ventricle (LV) of a mouse. B: Ligation of the coronary artery (left) or constriction of the aortic arch (right) in the mouse by openchest surgery. a: aorta; r.i.: right innominate artery; l.m.: left main carotid artery 图3 目前用小鼠模型进行心脏研究的基本途径是应用综合的研究手段在不同的层次去发现小鼠的心脏表现型,包括在病理情况下研究心脏形态和功能改变。这些表现型对于理解人类心脏病的分子机制、新的治疗靶分子和治疗途径具有重要的价值(略) Fig.3 Using genetically modified mice, researchers have adopted an integrated physiological approach to explore phenotypes that may bear key information on the regulation of physiology, pathogenesis of diseases and potential therapeutic targets 3.1 动脉粥样硬化的机制和模型 动脉粥样硬化的病因涉及多种基因和环境因素,因此较好地模拟临床病理特征的动物模型是研究发病机制和探讨有效治疗方案的关键。啮齿类动物的高密度脂蛋白(HDL)和低密度脂蛋白(LDL)的比值(HDL/LDL)远远高于人类,故不易诱发动脉粥样硬化病变。基于干扰脂蛋白代谢而建立的数种基因修饰小鼠在老龄或某些环境因素,例如高脂饮食、高血压、血管内皮损伤等的影响下,可以发生与人类相似的动脉粥样硬化病变。这些模型包括脂蛋白E基因敲除 (ApoE -/-)、低密度脂蛋白受体敲除(LDLR-/-)和表达变异的ApoE基因(E3L)[6]。应用这些小鼠模型进行的研究极大地促进了对动脉粥样硬化病变病因的认识和实验性治疗的探讨,已成为最常选用的动物模型。 3.2 心脏发生学及先天性心脏病的分子机制 应用基因敲除小鼠研究心脏胚胎发生的分子机制在近年里有了突破性进展。现已确定若干基因在心脏发生的各个阶段起到关键作用。例如,NKx2.5基因缺失小鼠发生心房心室间隔缺损和传导系统障碍[7]。又如组织转化因子β(TGFβ)影响心脏瓣膜的形成,而心肌的发生则受到多个基因的影响,包括ErbB、EF2、SRF、GATA和myocardin等[78]。新近的研究表明,敲除微小RNA1.2(miR1.2)可能通过抑制心脏发生中关键基因之一Hand的mRNA、蛋白的转录、翻译而干扰心房间隔的形成[9]。这些研究为深入了解心脏发生的分子机制打下了方法学基础,也为人类先天性心脏病的分子发病学和基因诊断提供了重要的实验依据。 3.3 心肌病的分子机制 心肌病的发生与肌节的结构蛋白、收缩蛋白或收缩调节蛋白的基因变异密切有关。目前已有上百种有关的基因变异或缺失小鼠模型的报道。心脏表现型研究证明其中绝大多数品系的小鼠发生各种类型的心肌病[78],而且许多小鼠心肌病的表现型与人类相关基因变异所致的心肌病相似。例如,α肌凝蛋白重链(αMHC)的变异导致肥厚型心肌病,而mLIM基因敲除小鼠发生扩张型心肌病[10]。目前利用小鼠复制相应基因变异已成为确定人类心肌病基因发病机制的重要研究手段。 3.4 心肌肥大的分子信号转导 生理性和病理性心肌肥大的分子机制是应用基因修饰小鼠的重要研究方面。应用表达组成型活化(constitutively active)和显性抑制(dominant negative)磷酸肌醇3激酶(PI3K)的基因修饰小鼠的研究证明,胰岛素生长激素(IGF1)/PI3K介导生理性心肌肥大[8,12],而多种信号通路通过钙/calcineurin或Gq蛋白/蛋白激酶C(PKC)等导致病理性心肌肥大。Olson的研究组应用基因修饰小鼠模型证实的Calcineurin通路是这一领域的突破性进展[13]。 3.5 心律失常的分子机制 目前,基因修饰小鼠已成为心脏电生理的主要哺乳类动物模型,相应的研究发现对理解心律失常发生及维持的基因和分子机制,尤其是离子通道病(channelopathy)概念的提出有着重要的贡献。离子通道病涉及细胞膜钾、钠或钙通道蛋白的变异。表达某些细胞膜离子通道蛋白的小鼠表现出人类相似的心脏电生理乃至心肌显微结构方面的异常,例如长或短QT综合征(LQTS,SQTS)或Brugada综合征[18]。许多心肌病小鼠也表现出各种类型的心律失常和心性猝死,为这方面的研究提供了有价值的模型。 3.6 细胞内钙的调控与心脏病的联系 在心肌舒张时相,衰竭心肌发生肌浆网内储存的钙经由Ryanodin受体(RyR)控制的钙通道而外漏,造成舒张期细胞内钙水平升高,由此导致心肌舒张不全和心律失常。利用一系列的小鼠模型,Marks的研究组最近证明,几种RyR结合蛋白起到了稳定RyR钙通道的作用。在心力衰竭情况下,这些蛋白质尤其是FK506结合蛋白(FKBP12.6)被过度磷酸化而与RyR分离,从而导致RyR通道功能异常进而引起钙库内钙外溢[22]。循此发现,目前已开发出数种RyR钙通道稳定剂,经实验研究证实具有改善心功能和抗心律失常的作用。 3.7 小鼠模型在心脏病基因或细胞治疗研究方面的应用 在心脏病基因或细胞治疗研究领域,小鼠模型的应用首先是提供了一系列的心脏疾病和实验工具。心力衰竭的突出问题是心肌收缩力减弱。利用基因修饰小鼠模型的研究业已确认,十余种基因干预可以长期提高基础状态下的心肌收缩性(表2)。例如过度表达肾上腺素能受体(α1A、β1、β2AR)等均可显著提高心肌收缩性[1]。然而进一步的研究发现其中一些品系的小鼠由于特定基因表达倍数过高或随着年龄增加而出现心肌病理损害和心肌病,提示基因干预(过度表达)具有量效关系(表2)[1,23]。有数种基因干预小鼠则无明显心脏病变而正性肌力作用长期保持,例如敲除受磷蛋白(phospholamban),过度表达5型腺甘环化酶或低倍数过度表达β2AR(<100倍)或α1AAR(<80倍)等。应用品系杂交的方法证明,敲除受磷蛋白可以逆转由于mLIM敲除或β1AR过度表达所引起的扩张型心肌病[10,24]。 表2 目前证实具有正性肌力表现型的一些基因修饰小鼠品系。其中一些品系发生心肌病而提示基因治疗“副作用”的可能(略) Table 2 Strains of genetically modified mice with identified cardiac hyperinotropy phenotype. Some of strians also develop with aging cardiomyopathy indicating sideeffect of gene overexpression 4 研究展望 【参考文献】 [2]Frey N, Olson EN. Cardiac hypertrophy: the good, the bad, and the ugly [J]. Annu Rev Physiol 2003, 65:4579. [3]Dorn G, Molkentin JD. Manipulating cardiac contractility in heart failure: Data from mice and men [J]. Circulation, 2004, 109(2):150158. [4]Yutzey KE, Robbins J. Principles of genetic murine models for cardiac disease [J]. Circulation, 2007, 115(6):792799. [5]Hoit BD. Murine physiology: measuring the phenotype [J]. J Mol Cell Cardiol, 2004, 37(3):377387. [6]Zadelaar S, Kleemann R, Verschuren L, et al. Mouse models for atherosclerosis and pharmaceutical modifiers [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2007, 27(8):17061721. [7]Olson EN. A decade of discoveries in cardiac biology [J]. Nat Med, 2005, 10(5):467474. [8]Dorn GW. Physiologic growth and pathologic genes in cardiac development and cardiomyopathy [J]. Trends Cardiovasc Res, 2005, 15(5):185189. 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